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《細胞培養(yǎng)從入門到精通:實驗人員操作指南》

更新時間:2025-12-23  |  點擊率:20

一、細胞培養(yǎng)的核心目標

 

細胞培養(yǎng)的本質(zhì)是在體外為細胞提供一個接近體內(nèi)的生存環(huán)境,使其能夠:

 

1. 存活:保持良好的生理狀態(tài)。

2. 增殖:在可控條件下穩(wěn)定生長。

3. 可重復實驗:為后續(xù)實驗(如藥物處理、轉(zhuǎn)染、蛋白表達等)提供可靠的細胞模型。

 

 

 

二、細胞培養(yǎng)的基本條件

 

1. 溫度與氣體環(huán)境

 

- 溫度:哺乳動物細胞一般為 37℃。

- CO?:常用 5% CO?,用于維持培養(yǎng)基中碳酸氫鹽緩沖體系的 pH(約 7.2–7.4)。

- 濕度:培養(yǎng)箱內(nèi)保持 95% 左右 的濕度,防止培養(yǎng)基蒸發(fā)。

 

2. 培養(yǎng)基與血清

 

基礎培養(yǎng)基(如 DMEMRPMI-1640MEM 等)提供:

 

- 氨基酸、維生素、無機鹽、葡萄糖等基礎營養(yǎng)。

- 酚紅作為 pH 指示劑(黃色偏酸,紫色偏堿)。

 

完quan培養(yǎng)基:基礎培養(yǎng)基 + 血清 + 必要添加物。

 

血清的作用:

 

- 提供生長因子(如 EGFFGF)。

- 提供貼壁因子,幫助細胞貼附在培養(yǎng)器皿表面。

- 提供載體蛋白(如白蛋白),運輸激素、脂質(zhì)等。

- 緩沖環(huán)境變化,提高細胞的穩(wěn)定性。

 

在選擇血清時,通常關注:

 

- 批次間穩(wěn)定性。

- 低內(nèi)毒素、低溶血。

- 無支原體等微生物污染。

 

 

 

三、無菌操作與生物安全柜

 

1. 生物安全柜的使用要點

 

- 操作前用 75% 乙醇擦拭臺面。

- 只放置當前實驗必需的物品,保持臺面整潔。

- 所有操作盡量在安全柜的中層區(qū)域進行,避免頻繁進出。

- 打開瓶蓋時,瓶口朝下傾斜,盡量縮短暴露時間。

- 操作結束后再次用 75% 乙醇擦拭臺面。

 

2. 無菌操作原則

 

- 動作要 輕、慢、穩(wěn),減少空氣擾動。

- 避免在安全柜內(nèi)劇烈晃動、講話時正對操作臺。

- 所有接觸細胞的液體和耗材必須是無菌的。

 

 

 

四、常用耗材與培養(yǎng)器皿

 

1. 培養(yǎng)器皿

 

- T 瓶:T25T75T175 等,數(shù)字表示培養(yǎng)面積。

- 多孔板:6122496 孔板,用于不同規(guī)模的實驗。

- 離心管:15 mL50 mL,用于細胞收集和重懸。

 

2. 耗材要求

 

- 無菌、無熱原。

- 貼壁細胞使用 TC-treated(組織培養(yǎng)處理)的器皿,以利于細胞貼附。

 

 

 

五、日常操作流程

 

1. 換液(Feeding

 

目的:補充營養(yǎng),清除代謝廢物。

 

貼壁細胞:

 

1. 吸棄舊培養(yǎng)基(注意不要吸到細胞層)。

2. 加入預熱的完quan培養(yǎng)基。

 

懸浮細胞:

 

1. 將細胞懸液轉(zhuǎn)移至離心管,1000 rpm 離心 5 min

2. 棄上清,用新鮮培養(yǎng)基重懸。

 

頻率:一般 23 天一次,根據(jù)細胞密度和培養(yǎng)基顏色調(diào)整。

 

 

 

2. 傳代(Passage

 

當細胞達到 7090% 匯合度 時進行傳代,以避免接觸抑制和狀態(tài)變差。

 

貼壁細胞(胰酶消化法):

 

1. 棄上清,用 PBS 輕洗一次。

2. 加入適量 0.25% Trypsin-EDTA37℃孵育 15 min,顯微鏡下觀察細胞變圓、開始脫落。

3. 加入含血清的完quan培養(yǎng)基終止消化。

4. 輕輕吹打,制成單細胞懸液。

5. 離心,棄上清,重懸于新鮮培養(yǎng)基。

6. 按比例(如 1:31:5)接種到新的培養(yǎng)瓶中。

 

懸浮細胞:

 

- 直接按比例稀釋到新的培養(yǎng)瓶中,必要時先離心去除死細胞和碎片。

 

 

 

3. 凍存與復蘇

 

凍存步驟:

 

1. 收集對數(shù)生長期細胞,離心。

2. 用凍存液重懸(常用配方:培養(yǎng)基: 血清: DMSO = 7:2:1 5:4:1DMSO 510%)。

3. 分裝入凍存管。

4. 放入程序降溫盒,-80℃過夜,再轉(zhuǎn)入液氮長期保存。

 

復蘇步驟:

 

1. 從液氮中取出凍存管,迅速放入 37 水浴,1 min 內(nèi)融化。

2. 立即加入大量預熱的完quan培養(yǎng)基,稀釋 DMSO

3. 離心,棄上清。

4. 重懸,接種到培養(yǎng)瓶中。

5. 復蘇后 24 h 內(nèi)盡量不換液,讓細胞恢復。

 

 

 

六、污染的識別與預防

 

1. 常見污染類型

 

細菌污染:

 

- 現(xiàn)象:培養(yǎng)基渾濁、變黃,顯微鏡下可見大量細小顆粒快速運動。

- 處理:通常直接丟棄,避免擴散。

 

真菌/酵母污染:

 

- 現(xiàn)象:培養(yǎng)基中出現(xiàn)絮狀團塊或絲狀結構。

- 處理:直接丟棄,徹di清潔培養(yǎng)箱。

 

支原體污染:

 

- 現(xiàn)象:培養(yǎng)基外觀正常,細胞生長變慢、形態(tài)異常。

- 危害:影響細胞代謝、基因表達和實驗結果。

- 檢測:PCRqPCR、熒光染色等。

- 預防:定期檢測,使用合格的血清和試劑,嚴格無菌操作。

 

 

 

七、細胞狀態(tài)的日常監(jiān)測

 

1. 每天觀察:匯合度、形態(tài)、培養(yǎng)基顏色和是否有異常顆粒。

2. 記錄:傳代次數(shù)、凍存時間、使用的血清批次等,建立細胞檔案。

3. 避免過度傳代:細胞長期傳代會出現(xiàn)基因型和表型漂移,建議使用早期代數(shù)。

 

 

 

八、實用小技巧

 

- 新拿到的細胞系,先查閱 ATCCCell Bank 等資料,了解其最jia培養(yǎng)條件。

- 同一細胞系盡量使用同一批次的血清和培養(yǎng)基,以保證實驗的一致性。

- 建立“備份細胞庫",在細胞狀態(tài)良好時多凍存幾管,防止污染或狀態(tài)變差時“斷檔"。

- 操作時保持耐心,避免“趕時間"導致的操作失誤。


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